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Editorial: Journal of economic behavior and organization: special issue on heterogeneous interacting agents in financial markets
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Tritium calibration of the LUX dark matter experiment
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Regulatory roles of LuxR[T] and cAMP-CRP on the lux operon of Photobacterium leiognathi
No full textPhotobacterium leiognathi ATCC 25521 lux operon 之調節區域含有四個對稱序列 ∑IV、∑III、∑II、∑I，一組 cAMP-CRP 結合位，以及兩組啟動子 P[DII]、P[DI]。其相關位置排列為：-∑IV-∑III-∑II-∑I-∑cAMP-CRP-P[DII]-P[DI]-SD-lux operon。利用 5’RACE 分析得知 lux operon 的轉錄起始點座落在 start codon 上游 -68 nt 的“C”核苷酸位置。利用胞內互補性螢光分析方式進行 glucose repression 試驗，證實此調控區含有 cAMP-CRP 之結合位，此位置座落在轉錄起始點上游 -71 nt 之位置，屬於 Class I cAMP-CRP dependent promoter。並於 E. coli中分析一系列 lux operon 調節區域中對稱序列刪除之重組質體，得知 ∑II 為一負向調控區，∑I 為一正向調控區。將 ∑I 與前之研究篩選獲得的可強化螢光表現之 LuxR[T] 進行一系列胞內反應，推測 LuxR[T] 會結合 ∑I，因而提升螢光之表現。凝膠遲滯分析結果亦顯示 (His)6-LuxR[T] 蛋白可與 ∑I 結合。因此，確認 LuxR[T] 可正調節 lux operon 螢光表現。此外，將包含 lux operon 調節區域質體的對稱序列 ∑II 進行部分鹼基突變，再以螢光分析該質體於 E. coli 之螢光表現，證實 ∑II 的確存在負調控機制，可能與未知蛋白結合，影響螢光表現。進一步以 EZ-Tn5TM TransposomeTM Kit 建構一含有任意基因被突變之 E. coil JM103y 族群，再送入含有 lux operon 調節區域之 plasmid，篩選螢光表現增強之轉殖株。目前，尚未篩選到能負調節 lux operon 表現之基因。最後，將可增強 lux operon 螢光之 luxR[T] 及 crp 基因，一起轉形至含有 lux operon 調節區域質體之 E. coil 中，分析螢光值。結果發現，同時存在 LuxR[T] 及 CRP 時，螢光表現提升，但提升程度與 CRP 單獨存在時之結果相似。因此，推測此二蛋白間存在排它效應 (exclusive effect)。本研究得知，lux operon 確實受到 cAMP-CRP 及 LuxR[T] 的正向調節作用，其作用機制仍待進一步研究分析。The regulatory region R&R of the lux operon from Photobacterium leiognathi ATCC 25521 was cloned and identified. The R&R includes four symmetrical sequence, a CRP binding site, and two putative promoters, arranging in the order of ∑IV-∑III-∑II-∑I-∑cAMP-CRP-P[DII]-P[DI]-SD-lux operon. The functional roles of these sequence in R&R are not clean. In this study, the 5' RACE assay results confirmed that the transcriptional initiation site of lux operon is the C nucleotide -68 nt upstream of the start codon, suggesting that the P[DII]-promoter is the one used for gene expression under this experimental condition. Glucose repression assays indicated that cAMP-CRP is involved in the regulation of lux operon. Belonging to Class I cAMP-CRP dependent promoter, the cAMP-CRP binding site is localized -71 nt upstream of the transcriptional start site. Serial deletion assays elicit that ∑II is a critical negative element and ∑I is a critical positive element in the R&R region. Previous studies have shown that LuxR[T] could enhance bioluminescence of P. leiognathi ATCC 25521 lux operon cloned in E. coli. In trans complementation Lux-bioassays showed that ∑I is closely related to LuxR[T]. Additionally, EMSA results revealed that LuxR[T] protein is able to bind ∑I of the lux operon R&R. On the other hand, the negative regulation effect of ∑II was demonstrated by base mutation. Furthermore, the EZ-Tn5TM TransposomeTM Kit was used to construct a pool of E. coil JM103y random mutant strains, and then, the plasmid carring lux operon R&R was transformed into this mutant pool and screened for transformants with bioluminescence. However, no positive result was obtained. Our bioassay result showed that the lux operon was also enhanced by crp gene. However, no additive effect was observed when luxR[T] gene coupled with the crp gene were cloned for enhancement of lux operon expression. These results clearly demonstrate that P. leiognathi lux operon is regulated by cAMP-CRP and LuxR[T], the response regulation of a two component system.摘要 i
Abstract ii
目錄 iii
圖表目錄 v
附錄 vi
前言 1
材料與方法 8
I. 菌種與質體 8
II. 試藥、試劑與緩衝液 8
III. 實驗方法 11
一、質體選殖 (cloning) 11
二、生長曲線與螢光表現之測定 14
三、蛋白純化 14
四、SDS-PAGE 蛋白質膠體電泳 15
五、西方墨點法分析 16
六、EMSA 17
七、序列之電腦比對 18
八、5’RACE 定轉錄起始點之方法 18
九、以 EZ-Tn5 建構一含有任意基因被突變之 E. coil 族群 20
結果與討論 22
一、P. leiognathi lux operon 調節區域序列分析 22
(一) P. leiognathi ATCC 25521 lux operon 轉錄起始點分析 22
(二) lux operon R&R ∑cAMP-CRP 序列及功能分析 22
(三) R&R 中刪除 -∑IV-∑III-∑II-∑I- 的系列質體之功能分析 23
二、可增強 P. leiognathi lux operon 螢光表現之 LuxR[T] 分析 24
三、LuxR[T] 與 lux operon R&R ∑I 之關係 26
(一) 質體 pCH23 對於 lux operon R&R ∑I 之調控功能分析 26
(二) 質體 pCH74-B1 對於 lux operon R&R ∑I 之調控功能分析 26
(三) luxR[T] 表現量對於 lux operon R&R ∑I 之調控功能分析 28
(四) LuxR[T] 之表現與純化 28
(五) LuxR[T] 蛋白與 lux operon 調控區 ∑I 序列結合之分析 29
四、lux operon R&R ∑II 負向調節功能分析 30
(一) lux operon R&R ∑II 負向調控之功能性分析 31
(二) lux operon R&R 對稱序列 ∑II之定點突變置換及分析 31
(三) 可負調節 lux operon 表現基因之篩選 32
五、Plac 與 Plux調控區之序列比較與分析 33
六、cAMP-CRP 與 LuxR[T] 對於lux operon 之調控關係 33
(一) P. leiognathi 之 CRP 對 lux operon 之調控功能分析 33
(二) CRP 與 LuxR[T] 對 lux operon 之調控功能分析 35
七、P. leiognathi不同品系間 R&R[lux] 之比較 35
總結 37
參考文獻 40
附錄 71
表一：本實驗所使用之菌種及其特性 47
表二：本實驗所使用之質體及其特性 48
表三：本實驗所使用之 Primers 及其序列 51
Fig. 1：P. leiognathi lux operon R&R 區域及系列刪減質體的相對應區域之示意圖 52
Fig. 2：P. leiognathi lux operon R&R之轉錄起始點的訂定 53
Fig. 3：P. leiognathi lux operon R&R ∑cAMP-CRP 之功能分析 54
Fig. 4：包含 lux operon R&R 對稱序列刪除系列 -∑IV-∑III-∑II-∑I- 質體的 E. coli 轉殖株之螢光與生長曲線圖 55
Fig. 5：lux operon R&R正向調控序列 ∑I 之功能分析 56
Fig. 6：LuxR[T] 與其他物種之胺基酸序列比對 57
Fig. 7：LuxR[T] 的 functional domains 及 conserved 胺基酸序列 58
Fig. 8：質體 pCH23 對 lux operon 之調節功能分析 59
Fig. 9：luxR[T] 基因對 lux operon 之調節功能分析 60
Fig. 10：不同啟動子帶動 luxR[T] 表現對於 lux operon 之調節功能分析 61
Fig. 11：LuxR[T]-(His)6 蛋白之純化 62
Fig. 12：LuxR[T]-(His)6 蛋白與 lux operon 調控區 DNA 片段之 EMSA 63
Fig. 13：LuxR[T]-Pi 蛋白與 lux operon 調控區 DNA 之 EMSA 64
Fig. 14：包含質體 pYFL1 及 pUH93-B 的 E. coli 之螢光與生長曲線圖 65
Fig. 15：包含質體 pYFL1 及 pYT2 的 E. coli 之螢光與生長曲線圖 66
Fig. 16：lux operon調控區 ∑II 序列突變置換效應 67
Fig. 17：Plac 與 Plux 調控區之序列比較與分析 68
Fig. 18：crp 基因對 lux operon 之調節功能分析 69
Fig. 19：luxR[T] 及 crp 基因對 lux operon 之調節功能分析 70
附錄一：螢光菌發光之生化反應機制 71
附錄二：P. leiognathi ATCC 25521 lux operon 之調節區域及本實驗所使用之 primer 相對位置 72
附錄三：P. leiognathi PL741 lux operon 之調節區域及對稱性區域之序列 73
附錄四：luxR[T] 基因及其鄰近基因組成 74
附錄五：P. leiognathi ATCC 25521 的 luxR[T] 基因及鄰近序列 75
附錄六：載體 pYFL01/ pYFL02 及 pYFL1 map 圖 80
附錄七：pYT1 質體之構築 81
附錄八：pYT2 質體之構築 82
附錄九：質體 pYFL01-T4 (pJH93N) 之構築 83
附錄十：質體 pYF28-MI-N 及 pYF28-MII-N 之構築 84
附錄十一：質體 pCH74-B1 及 pYT5之構築 85
附錄十二：P. leiognathi ATCC 25521 的 crp 基因及鄰近序列 86
附錄十三：5’RACE 定序結果圖 8
Toward a Biocommunicable Cartography of Health Decision-Making in the Amazon Basin of Ecuador
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