Ilmu Pertanian (Agricultural Science)

Subandiyah, Siti

Hayward, A. C.

Fegan, M.

Fingerprint Analysis of DNA Fragments of Pseudomonas solanucearum E.F. Smith Isolates

Sudikno, Titi Sudarti

Beberapa Usaha Untuk Mempercepat Perkecambahan Biji Belinjo (Gnetum gnemon L.)Beberapa Usaha Untuk Mempercepat Perkecambahan Biji Belinjo (Gnetum gnemon L.)

Suyadi, Aman

Purwantoro, Aziz

Trisnowati, Sri

Ilmu Pertanian Vol. 10 No. 2, 2003 : 11-16  
 
PENGGANDAAN TUNAS ABACA MELALUI KULTUR MERISTEM 
 
MULTIPLICATION OF ABACA BUD THROUGH MERISTEM CULTURE 
 
Aman Suyadi1, Aziz-Purwantoro2 dan Sri Trisnowati2 
 
ABSTRACT 
The study on “Multiplication of Abaca Bud Through Meristem Culture” has aims to 
evaluate the effect of combinant concentration of plant growth regulator of BAP and 
NAA, and determine the proper combinant concentration to multiplication the abaca bud 
in the abaca meristem culture.  
The study was conducted from October 2002 to April 2003 according to Randomized 
Completely Block Design to regulate the three-time treatment without any control. The 
treatment is made up by two factors. The first factor is concentration of BAP consisting of 
four levels, those are 0 M (B0), 10-7 M (B7), 10-6  M (B6) and 10-5 M (B5). The second 
factor is concentration of NAA, consisting of three levels, i.e., 0 M (N0), 10-7 M (N7), and 
10-6 M (N6). 
The result of the study proves that the combination of BAP and NAA gives a significant effect 
to the parameter of buds number,  buds length and number of leaves in subculture I and subculture 
II. The treatment of B5N7 results in the highest of buds number or in the number of leaves, i.e.,  
5.07 and 6.00 in sub culture I and 4.37  and 6.25 in sub culture II, respectively. 
 
Key words: Abaca, Meristem, BAP, NAA. 
 
INTISARI 
Penelitian “Penggandaan Tunas Abaca Melalui Kultur Meristem” bertujuan untuk 
mengevaluasi pengaruh kombinasi zat pengatur tumbuh BAP dan NAA serta menentukan 
konsentrasi kombinasi zat pengatur tumbuh tersebut yang tepat untuk penggandaan tunas 
pada kultur meristem abaca. 
Penelitian dilaksanakan mulai bulan Oktober 2002 hingga bulan Maret 2003. Rancangan 
Acak Kelompok digunakan untuk mengatur perlakuan dengan tiga ulangan tanpa kontrol. 
Perlakuan terdiri dari dua faktor, faktor pertama adalah konsentrasi BAP yang terdiri dari 4 
taraf , yaitu 0 M (B0), 10-7 M (B7), 10-6 M (B6), 10-5  M (BB
                                                
5) dan faktor kedua adalah 
konsentrasi NAA yang terdiri dari 3 taraf , yaitu 0 M (N0), 10  M (N-7 7) dan 10  M (N-6 6). 
Hasil penelitian menunjukkan bahwa kombinasi konsentrasi BAP dan NAA berpengaruh 
nyata terhadap jumlah tunas, panjang tunas dan jumlah daun pada sub kultur I dan sub kultur 
II. Perlakuan B5N7 mampu menghasilkan jumlah tunas dan jumlah daun terbanyak masing-masing 
5,06 buah dan 6,00 helai pada sub kultur I serta 4,37 buah dan 6,25 helai pada sub kultur II. 
 
Kata kunci : Abaca, Meristem, BAP, NAA. 
 
1 Fakultas Pertanian Universitas Muhammadiyah, Purwokerto 
2 Fakultas Pertanian Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta. 
 
                                                                 Ilmu Pertanian                                         Vol. 10 No. 2 12 
 
PENDAHULUAN 
Pisang abaca (Musa textilis Nee), sering disebut sebagai abaca, merupakan tanaman 
penghasil serat yang banyak digunakan sebagai bahan pembuat tali kapal laut (Dempsey, 
1963).Selain itu bubur serat abaca juga sangat baik untuk bahan baku kertas tipis dan 
kertas yang memiliki kekuatan dan daya simpan tinggi (Syahid dan Mariska, 1994; 
Triyanto dkk., 1982). Serat abaca juga digunakan sebagai bahan baku tekstil pengganti 
serat kapas, jok kursi, kerajinan tangan berupa dompet  dan tas, serta pengganti asbes 
yang lebih sehat (Sudjendro, 1999).  
Perbanyakan abaca dapat melalui teknik kultur in-vitro. Salah satu tahapan dalam 
teknik kultur in-vitro adalah penggandaan tunas. Tunas yang digandakan  dapat berasal 
dari tunas mikro hasil induksi meristem apikal sebagai sumber eksplan, sehingga disebut 
kultur meristem.  Kelebihan kultur meristem adalah mampu menghasilkan bibit tanaman 
yang identik dengan induknya dan bebas virus. Rice et al. (1992) mengatakan bahwa 
kultur meristem mampu meningkatkan laju induksi dan penggandaan tunas, mampu 
memperbaiki mutu bibit yang dihasilkan, mampu mempertahankan sifat-sifat morfologi 
yang positif.  
Keberhasilan penggandaan tunas abaca melalui kultur meristem sangat tergantung 
pada keseimbangan zat pengatur tumbuh golongan auksin dan sitokinin, terutama 
keseimbangan antara  6-Benzil Amino Purin (BAP)  dan Asam Naftalen Asetat (NAA). 
BAP adalah zat pengatur tumbuh sintetik yang berperan antara lain dalam pembelahan sel 
dan morfogenesis  sedangkan NAA adalah zat pengatur tumbuh sintetik yang mampu 
mengatur berbagai proses pertumbuhan dan pemanjangan sel (George dan Sherrington, 
1984).  Menurut Bhagyalakshmi dan Singh (1998) pemberian NAA pada konsentrasi 
0,01-0,8 mg/l yang dikombinasikan dengan kinetin mampu memperbaiki penggandaan 
tunas jahe.  Kombinasi konsentrasi 2 mg/l 2.4-D dengan 0,5 mg/l BAP pada medium 
dasar MS merupakan kombinasi terbaik untuk penggandaan tunas kacang tanah dan 
embriogenesis ubi jalar. Efektifitas BAP dan NAA pada penggandaan tunas abaca 
melalui kultur meristem belum diketahui secara pasti sehingga perlu dilakukan penelitian 
lebih lanjut. 
 
BAHAN DAN METODE PENELITIAN  
Bahan yang digunakan untuk induksi tunas mikro adalah meristem apikal yang 
diisolasi dari mata tunas yang dihasilkan di Laboratorium Kultur Jaringan Universitas 
Muhammadiyah Purwokerto. Tunas tersebut digunakan sebagai sumber eksplan, mata 
tunas dikupas 3-4 lapis hingga berukuran 1 x 1,5 cm, sterilisasi dilakukan dengan cara 
membersihkan dan mencuci mata tunas dengan detergen  dan dibilas pada air mengalir 
sebanyak tiga kali kemudian merendamnya dalam 70 % etanol selama 10 menit dan 
dalam 70 % bayclin selama 15 menit sambil dikocok, selanjutnya dibilas dengan akuades 
steril sebanyak  tiga kali. Mata tunas ditanam pada medium dasar MS, tunas mikro yang 
tumbuh digunakan sebagai sumber meristem.  
Penggandaan tunas diawali dengan induksi tunas, induksi tunas dilakukan dengan 
cara menanam meristem yang diisolasi dari tunas mikro steril  pada medium induksi tunas 
(perlakuan). Tunas mikro yang terbentuk pada tahap induksi tunas di gandakan pada 
medium yang sama (perlakuan) selama 2 kali subkultur. Perlakuan penggandan tunas 
Suyadi, et al. : Penggandaan tunas abaca melalui kultur meristem 13                                                                      
 
terdiri dari dua faktor, yaitu BAP dengan 4 taraf konsentrasi masing-masing : 0 M (B0), 
10-7 M (B7), 10-6 M (B6) dan 10-5  M (B B5 ); NAA dengan 3 taraf konsentrasi masing-
masing : 0 M (N0), 10  M (N-7 7), 10  M (N-6 6).  Perlakuan dikombinasikan secara faktorial 
dalam rancangan acak kelompok lengkap tanpa kontrol dengan tiga ulangan.  Setiap unit 
perlakuan menggunakan 5 botol kultur yang ditanami satu tunas mikro untuk setiap botol. 
Pengamatan dilakukan setelah 5 minggu kultur terhadap parameter : Jumlah tunas, 
panjang tunas dan jumlah daun pada sub kultur I dan sub kultur II . 
Data hasil pengamatan dianalisis dengan uji F pada tingkat kepercayaan 95%, jika 
menunjukkan adanya perbedaan yang nyata maka dilanjutkan dengan uji Beda Nyata 
Terkecil (BNT) pada taraf kepercayaan 95%. 
 
HASIL DAN PEMBAHASAN 
Kombinasi konsentrasi BAP dan NAA berpengaruh nyata terhadap jumlah tunas, 
panjang tunas dan jumlah daun baik pada sub kultur I maupun sub kultur II. Rerata 
jumlah tunas, panjang tunas dan jumlah daun abaca pada berbagai konsentrasi BAP dan 
NAA pada penggandaan tunas abaca melalui kultur meristem disajikan pada tabel 1. 
 
  
Tabel 1.  Rerata jumlah tunas (buah), panjang tunas (cm) dan jumlah daun (helai)    abaca 
pada sub kultur I dan sub kultur II  pada berbagai konsentrasi   BAP dan NAA 
 
PERLA 
KUAN 
Jumlah Tunas  
(buah) 
Panjang Tunas  
(cm) 
Jumlah Daun 
(helai) 
 SK I SK II SK I SK II SK I SK II 
B0N7 2.80 de 2.42 cd 1.65 e 2,46 c 3.13 d 3.17 e
B0N6 2.40 e 2.30 cd 1.89 de 2,38 cd 3.13 d 3.39 de
B7N0 3.13 cd 2.08 de 2.76 c 3,57 bc 3.70 cd 3.83 cd
B7N7 2.63 de 3.04 bc 4.96 a 3,13 ab 3.03 d 3.08 e
B7N6 2.89 de 1.94 de 2.70 c 3,18 a 3.53 cd 2.50 f
B6N0 4.13 b 3.38 b 1.84 de 1,58 e 3.93 c 2.33 f
B6N7 3.80 bc 2.02 de 2.76 c 1,45 e 5.53 ab 3.53 de
B6N6 2.65 de 1.48 e 3.80 b 2,49 c 4.95 b 3.53 de
B5N0 2.80 de 3.72 ab 2.28 cde 1,81 de 3.73 cd 4.25 bc
B5N7 5.07 a 4.37 a 2.56 cd 1,41 e 6.00 a 6.25 a
B5N6 4.17 b 3.37 b 1.62 e 1,79 e 5.17 b 4.50 b
Keterangan : Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom dan 
perlakuan yang sama tidak menunjukkan perbedaan yang nyata satu 
dengan lain pada uji BNT 5% 
SK I    =  Subkultur I 
SK II   =  Subkultur II  
 
 
 
 
                                                                 Ilmu Pertanian                                         Vol. 10 No. 2 14 
 
A.  Jumlah Tunas  
Interaksi antara konsentrasi BAP dan konsentrasi NAA berpengaruh sangat nyata 
terhadap jumlah tunas.  Jumlah tunas terbanyak diperoleh pada kombinasi perlakuan B5N7 
(10-5 M BAP dan 10-7 M NAA) yaitu 5.07 buah pada subkultur I dan 4,37 buah pada 
subkultur II (tabel 1), hasil ini lebih rendah dari hasil penelitian  Sisunandar dan Julia 
(2000) yang mampu menghasilkan tunas sebanyak 6 buah pada perlakuan yang sama, hal 
ini menunjukkan bahwa kombinasi perlakuan B5N7 (10-5 M BAP dan 10-5 NAA) 
merupakan kombinasi terbaik untuk menghasilkan tunas terbanyak.  Pada sub kultur II 
jumlah tunas yang dihasilkan lebih sedikit dibanding pada subkultur I hal ini diduga 
karena  telah terjadi perubahan fisiologi sel,  menurut Bhojwani dan Rhazdan (1983) 
perubahan kemampuan penggandaan diduga oleh berubahnya fisiologi sel. Pada awal 
subkultur, sel masih sangat sensitif terhadap zat pengatur tumbuh namun setelah 
memasuki beberapa subkultur, sel akan mengalami perubahan sitologi menjadi tidak 
stabil sehingga kurang sensitif terhadap zat pengatur tumbuh.  Akibatnya selama periode 
subkultur terjadi perubahan kemampuan penggandaan. Penurunan jumlah tunas yang 
terbentuk pada subkultur II dibandingkan subkultur I juga dilaporkan oleh Krishnan et al. 
(1995) pada kultur pucuk Trichopus zeylanicus. 
 Jumlah tunas paling sedikit diperoleh pada kombinasi perlakuan  B0N6 (0 M BAP 
dan 10-6 M NAA) sebanyak 2,40 buah pada subkultur I dan kombinasi perlakuan B6N6 
(10-6 M BAP dan 10-6 M NAA) sebanyak 1,48 buah pada subkultur II (tabel 1).  
Hasil ini menunjukkan bahwa pada konsentrasi NAA yang sama (10-6 M NAA) 
peningkatan konsentrasi BAP akan menurunkan jumlah tunas yang dihasilkan, hal ini 
diduga karena BAP mampu menstimulir pembentukan NAA endogen sehingga 
konsentrasi NAA endogen dan eksogen berada pada kondisi supra optimal.  Menurut 
George dan Sherrington (1984), perimbangan konsentrasi aksin dan sitokinin yang tepat 
sering kali mampu memperbaiki penggandaan tunas. 
 
B.  Panjang Tunas  
Panjang tunas berkorelasi negatif dengan jumlah tunas. Tunas semakin pendek 
sejalan dengan peningkatan jumlah tunas, demikian pula sebaliknya.  Hal ini diduga 
karena adanya persaingan antar tunas dalam memperoleh nutrisi dan ruang tumbuh.  
Kompetisi semakin meningkat sejalan dengan meningkatnya jumlah tunas. Sitompul dan 
Guritno (1995) menyatakan, kompetisi dapat terjadi diantara bagian-bagian tanaman pada 
tanaman yang sama dan disebut kompetisi intra tanaman (intra plant competition).  
Kompetisi disebabkan oleh dua faktor, yaitu hadirnya organ baru diantara organ yang lain 
dan terbatasnya faktor pertumbuhan yang ada, antara lain nutrisi dan ruang tumbuh. 
Interaksi antara konsentrasi NAA dan konsentrasi BAP pada subkultur I 
menghasilkan tunas terpanjang dan terpendek masing-masing pada kombinasi perlakuan 
B B7N7 (10  M BAP dan 10  M NAA) yaitu 4,96 cm dan kombinasi perlakuan B-7 -7 5N6 (10  
M BAP dan 10  M NAA)  yaitu 1,62 cm , sedangkan pada subkultur II tunas terpanjang 
dan terpendek masing-masing diperoleh pada perlakuan B
-5
-6
7N0 (10  M BAP dan 0-7   M 
NAA) sepanjang 3,57 cm dan pada perlakuan B5N7 (10  M BAP dan 10-7 -5  M NAA) 
sepanjang 1,41 cm (tabel 1). 
Suyadi, et al. : Penggandaan tunas abaca melalui kultur meristem 15                                                                      
 
Perbedaan tunas terpanjang antara subkultur I dengan subkultur II diduga oleh 
kemampuan tunas dalam mensintesis NAA endogen sehingga konsentrasi NAA endogen 
dan NAA eksogen  berada pada kondisi supra optimal, peningkatan konsentrasi NAA 
eksogen pada sub kultur  II semakin menciptakan NAA pada konsentrasi  supra  optimal,  
sedangkan  pada  tunas  terpendek  konsentrasi  NAA. 
endogen dan NAA eksogen  masih berada pada kondisi sub optimal,  akibatnya 
panjang tunas semakin menurun. Tabel 1 menunjukkan bahwa panjang tunas berkorelasi 
negatif dengan jumlah tunas, pada perlakuan yang sama jumlah tunas terbanyak akan 
menghasilkan tunas terpendek demikian juga sebaliknya.  Hal ini diduga akibat adanya 
hambatan pertumbuhan tunas aksiler sebagai akibat pertumbuhan tunas apical. 
 
C.  Jumlah Daun  
Interaksi antara konsentrasi BAP dan konsentrasi NAA berpengaruh sangat nyata 
terhadap jumlah daun. Kombinasi konsentrasi BAP dan konsentrasi NAA pada subkultur 
I dan subkultur II menghasilkan jumlah daun terbanyak pada perlakuan B5N7 (10-5 M 
BAP dan 10-7 M NAA) masing-masing sebanyak 6 helai dan 6,25 helai.  Jumlah daun 
paling sedikit diperoleh pada perlakuan B7N7 ( 10-7 M BAP dan 10-7 M NAA) yaitu 
sebanyak 3,03 helai pada subkultur I dan pada perlakuan B6N0 (10-6 M BAP dan 0 M 
NAA) sebanyak 2,33 helai pada subkultur II (tabel 1). 
Peningkatan jumlah daun lebih dikarenakan oleh peningkatan jumlah tunas. Tabel 1 
memperlihatkan bahwa, semakin banyak tunas akan diikuti oleh meningkatnya jumlah 
daun.  Menurut Salisbury dan Ross (1992), primordia daun tidak berkembang secara acak 
di sekitar apeks tajuk, tetapi memiliki susunan yang khas yang disebut filotaksis.  Tanda 
arah pembentukan daun adalah pembelokan sel di salah satu dari ketiga lapisan terluar 
dari permukaan luar apeks tajuk.  
Penurunan jumlah daun paling sedikit dari sub kultur I ke sub kultur II diduga karena 
konsentrasi BAP dan NAA berada pada kondisi sub optimal, kombinasi konsentrasi BAP 
dan NAA ini tidak efektif untuk menghasilkan jumlah daun. Pada sub kultur II, walaupun 
konsentrasi BAP ditingkatkan dan konsentrasi NAA diturunkan namun belum efektif 
untuk meningkatkan jumlah daun.  Menurut Minocha (1987) apabila kondisi auksin dan 
sitokinin endogen berada pada kondisi sub optimal maka diperlukan penambahan auksin 
dan sitokinin secara eksogen sehingga diperoleh perimbangan yang optimal. 
 
KESIMPULAN  
Kombinasi konsentrasi BAP dan NAA berpengaruh nyata terhadap variabel jumlah 
tunas, panjang tunas dan jumlah daun. Jumlah tunas dan jumlah daun terbanyak 
dihasilkan pada kombinasi konsentrasi 10-5 M BAP dan 10-7 M NAA, masing-masing 
sebanyak 5,07 buah dan  6,00 helai pada sub kultur I serta 4,37 buah dan 6,25 pada sub 
kultur II selama lima minggu kultur. 
 
 
 
 
 
                                                                 Ilmu Pertanian                                         Vol. 10 No. 2 16 
 
DAFTAR PUSTAKA 
 
Bhagyalakshmi dan Sing, N.S.1988. Meristem Culture and Micropropagation of a Variety 
of Ginger (Zingiber officinale Rosch) with a High Yield of Oleoresin. Journal of 
Hort. Sci, 1988. 63: 2; 321-327; 3 pl: 10 ref. 
Bhojwani, S.S., dan Razdan, M.K. 1983.  Plant Tissue Culture Theory and Practise 
Elsevier. Amsterdam. Oxford, New York, Tokyo. p : 287-372. 
Dempsey, J.M. 1963. Long Vegetable Fiber Developmentin South Vietnam and other 
Asian Countries. Overseas Mission, Saigon, p : 157-162. 
George, E.F. dan Sherrington, P.D. 1984. Plant Propagation by Tissue Culture. Exergetic 
Limited. England. p. 39-71; 331-382. 
Krishnan, P.N., Sudha, C.G. dan Seeni, S. 1995. Rapid Propagation trough Shoot Tip 
Culture of Trichopus zeylanicus  Geartn., a rare Ethnomedicinal Plant, Plant Cell 
Rep. 14 : 708-711. 
Minocha, S.C. 1987. Plant Growth Regulators and Morphogenesis in Cell and Tissue 
Culture of Forest Trees. in :  Cell and Tissue Culture in Forestry. Vol. I. Eds. 
Bonga, J.M. dan Durzan, D.J. Martinus Nijhoff Publishers. Dordrecht. Boston. 
Lancaster. p. 50-66. 
Rice, R.D., Anderson, P.G., Hall J.F. dan Ranchod, A. 1992. Micropropagation : 
Principles and Commercial Practise dalam Plant Biotechnology. Fowler , M.W., 
Warren, G.S. dan Moo, Y. M. (Ed).  Pergamon Press Oxford, New York, Seoul, 
Tokyo; p : 130-149. 
Salisburry, F.B. dan Ross, C.W.1992. Plant Physiology. Wadsworth Publishing 
Company, California 
Sisunandar dan Julia, D. 2000. Perbanyakan Pisang Abaka (Musa textilis Nee.) cv. 
Tangongon secara In vitro. Laporan Penelitian. FKIP Univ. Muhammadiyah 
Purwokerto. 
Sitompul, S.M. dan Guritno.B. 1995. Analisis Pertumbuhan Tanaman. Gadjah Mada 
University Press, Yogyakarta  
Sudjendro. 1999. Abaca (Musa textilis Nee) : Potensi, pola pengembangan dan 
Masalahnya.  Warta Penelitian dan Pengembangan Tanaman Industri, Vol. 5 No.3 
Desember 1999. 
Syahid, S.F. dan Mariska, I.1994.  Penyediaan Bibit Abaca (Musa textileis Nee) Melalui 
Kultur Jaringan. Media Komunikasi Litbang Tanaman Industri, Bogor 10-11 Des 
1991, PAU Biotek IPB, hal : 102-113 
Triyanto, Muliah, H.S. dan Edi, M. 1982.  Batang Abaca (Musa textilis Nee) 
sebagai Bahan Baku Kertas. Berita Selulosa 17 (2) :1-27. 
 
 


English

Penggandaan Tunas Abaca Melalui Kultur Meristem

Kurniasih, Budiastuti

Zahrotunissa, Yulia

Pertumbuhan dan Hasil Padi Merah Andel Abang (oryza sativa L.) Dengan Cara Pengairan dan Macam Pupuk Organik yang Berbeda

Kastono, Dody

Sawitri, Hermien

Siswandono, Siswandono

Pengaruh Nomor Ruas Setek Dan Dosis Pupuk Urea Terhadap Pertumbuhan dan Hasil Kumis Kucing

Ngadiman, Ngadiman

Identification Of An Antagonistic Actinomycete And Its Use In The Biocontrol of Potato Scab

Sulistyaningsih, Endang

Tashiro, Yosuke

Determination of Ploidy Levels of Shallot and Japanese Bunching Onion by Flow Cytometry

Indradewa, Didik

Sastrowinoto, Soemartono

Notohadisuwarno, Supriyanto

Priyono, Fx. Agus

Fase Pertumbuhan Tanaman yang Tanggap terhadap Genangan dalam Parit di Lapangan

Utami, Ning Wikan

Kombinasi Pemotongan Pucuk dan Pemupukan Dalam Usaha Meningkatkan Produksi Kacang Tanah (Arachis hypogaea L.).

Tjokroseodarmo, Ambarwati Harsojo

Biologi Jamur Upas

Not a member yet