Beiträge zur Entomologie = Contributions to Entomology (E-Journal)
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Revision der von Ferdinand Rudow beschriebenen Ichneumonidae. II: Pezolochus Förster und Pezomachus Gravenhorst (Hymenoptera, Ichneumonidae).
No full textFerdinand Rudow hat 1914 und 1917 in den Gattungen Pezolochus Förster und Pezomachus Gravenhorst (Ichneumonidae, Hymenoptera) 67 Arten beschrieben, die meisten aus der Westpaläarktis, vier aus der Nearktis (Pezomachus caudatus, Pezomachus dimidiativentris, Pezomachus longipes, Pezomachus melanofthalmus). Mit Ausnahme von drei aus Nordamerika beschriebenen Arten werden alle Taxa hier revidiert. Von vier Arten konnte kein Typenmaterial aufgefunden werden, davon wurde eine Art anhand der Beschreibung gedeutet, und die drei übrigen Taxa bleiben Nomina dubia. 18 Namen sind praeoccupiert und ein Name (Pezomachus monozonius) ist möglicherweise praeoccupiert. Es werden 58 Lectotypen festgelegt und insgesamt 57 neue Synonyme eingeführt. Nur zwei von Rudow gegebene Artnamen (Pezomachus haemorhoidalis, Pezomachus ruficeps) werden derzeit als gültige Namen angesehen.Nomenklatorische Handlungenhaemorhoidalis (Rudow, 1917) (Gelis), Lectotype described as Pezomachus haemorhoidalisruficeps (Rudow, 1914) (Gelis), comb. n. hitherto Pezomachus ruficepsobvia Ceballos, 1925 (Gelis (Thaumatotypidea)), syn. n. of Gedlis haemorrhoidalis (Rudow, 1917)gracilis Rudow, 1917 (Pezolochus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)longicauda Rudow, 1914 (Pezolochus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)albulae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)alpinus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)aphidicola Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis bicolor (Villers, 1789)aphidum Rudow, 1917 (Pezomachus), syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827araneicola Rudow, 1914 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827araneicolus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Pezomachus ? rufogaster Thunberg, 1827araneivorus Rudow, 1914 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis longulus (Zetterstedt, 1838)balteatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827bicolorinus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)borealis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis corruptor (Förster, 1850)braconidum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)clythrae Rudow, 1917 (Pezomachus), syn. n. of Aptesis nigrocincta (Gravenhorst, 1815)coccivorus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis notabilis (Förster, 1850)collaris Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis vagans (Olivier, 1792)cruentatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis acarorum (Linnaeus, 1758)cruentus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis longulus (Zetterstedt, 1838)cuculliae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)ephippium Rudow, 1914 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis meigenii (Förster, 1850)eupitheciae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)exareolatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Ledctotype; syn. n. of Gelis vagans (Olivier, 1792)flavipes Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)formicarius Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. ? of Gelis ? bicolor (Villers, 1789)fulvicornis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis acarorum (Linnaeus, 1758)globulus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis femoralis (Brischke, 1881)graecus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis lichtensteini (Pfankuch, 1913)helicis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)hercyniae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis melanocephalus (Schrank, 1781)intrans Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)isabellinus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827lineatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)melanofthalmus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis venatorius (Förster, 1850)mezozonius Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rotundiventris (Förster, 1850)microrum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)minimus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)monozonicus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)nigerrimus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)nigrocinctus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; nom. praeocc. of Aptesis nigrocincta (Gravenhorst, 1815)pemphigicola Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827pieridis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827pilosellus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Theroscopus pedestris (Fabricius, 1775)potentillae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gedlis vagans (Olivier, 1792)psychidum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis vagans (Olivier, 1792)psychivorus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)retiniae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis corruptor (Förster, 1850)rosarum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)rufipes Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis semirufus (de Stefani, 1884)rufostictus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)selandriae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Theroscopus trifasciatus Förster, 1850siculus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis lichtensteini (Pfankuch, 1913)ulmicola Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827unicinctus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gewlis acarorum (Linnaeus, 1758)vanessae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)verrucosus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis formicarius (Linnaeus, 1758)versicolor Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis corruptor (Förster, 1850)violaceus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cyanurus (Förster, 1850)Ferdinand Rudow (1914 and 1917) described 67 species in the genera Pezolochus Förster and Pezomachus Gravenhorst (Ichneumonidae, Hymenoptera). Most of them are from the Western Palearctic Region, four taxa are Nearctic (Pezomachus caudatus, Pezomachus dimidiativentris, Pezomachus longipes, Pezomachus melanofthalmus). With the exception of three Nearctic species all taxa are revised here. The types of four species could not be found. One of these is interpreted after the original description, and the other three names are still nomina dubia. 18 names are preoccupied, and one name (Pezomachus monozonius) is possibly preoccupied. 57 lectotpyes are designated, and altogether 57 new synonyms are indicated. Only two names given by Rudow (Pezomachus haemorhoidalis, Pezomachus rificeps) are considered to be valid names for known species. Nomenclatural Actshaemorhoidalis (Rudow, 1917) (Gelis), Lectotype described as Pezomachus haemorhoidalisruficeps (Rudow, 1914) (Gelis), comb. n. hitherto Pezomachus ruficepsobvia Ceballos, 1925 (Gelis (Thaumatotypidea)), syn. n. of Gedlis haemorrhoidalis (Rudow, 1917)gracilis Rudow, 1917 (Pezolochus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)longicauda Rudow, 1914 (Pezolochus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)albulae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)alpinus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)aphidicola Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis bicolor (Villers, 1789)aphidum Rudow, 1917 (Pezomachus), syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827araneicola Rudow, 1914 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827araneicolus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Pezomachus ? rufogaster Thunberg, 1827araneivorus Rudow, 1914 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis longulus (Zetterstedt, 1838)balteatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827bicolorinus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)borealis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis corruptor (Förster, 1850)braconidum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)clythrae Rudow, 1917 (Pezomachus), syn. n. of Aptesis nigrocincta (Gravenhorst, 1815)coccivorus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis notabilis (Förster, 1850)collaris Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis vagans (Olivier, 1792)cruentatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis acarorum (Linnaeus, 1758)cruentus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis longulus (Zetterstedt, 1838)cuculliae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)ephippium Rudow, 1914 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis meigenii (Förster, 1850)eupitheciae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)exareolatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Ledctotype; syn. n. of Gelis vagans (Olivier, 1792)flavipes Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)formicarius Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. ? of Gelis ? bicolor (Villers, 1789)fulvicornis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis acarorum (Linnaeus, 1758)globulus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis femoralis (Brischke, 1881)graecus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis lichtensteini (Pfankuch, 1913)helicis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)hercyniae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis melanocephalus (Schrank, 1781)intrans Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)isabellinus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827lineatus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)melanofthalmus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis venatorius (Förster, 1850)mezozonius Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rotundiventris (Förster, 1850)microrum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)minimus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis ruficornis (Retzius, 1783)monozonicus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)nigerrimus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)nigrocinctus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; nom. praeocc. of Aptesis nigrocincta (Gravenhorst, 1815)pemphigicola Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827pieridis Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827pilosellus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Theroscopus pedestris (Fabricius, 1775)potentillae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gedlis vagans (Olivier, 1792)psychidum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis vagans (Olivier, 1792)psychivorus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cursitans (Fabricius, 1775)retiniae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis corruptor (Förster, 1850)rosarum Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)rufipes Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis semirufus (de Stefani, 1884)rufostictus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)selandriae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Theroscopus trifasciatus Förster, 1850siculus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis lichtensteini (Pfankuch, 1913)ulmicola Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis rufogaster Thunberg, 1827unicinctus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gewlis acarorum (Linnaeus, 1758)vanessae Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis agilis (Fabricius, 1775)verrucosus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis formicarius (Linnaeus, 1758)versicolor Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis corruptor (Förster, 1850)violaceus Rudow, 1917 (Pezomachus), Lectotype; syn. n. of Gelis cyanurus (Förster, 1850
Deutung der von Boie, Hartig und Ratzeburg beschriebenen Anomaloninae (Hymenoptera, Ichneumonidae).
No full textEs werden die von Boie, Hartig und Ratzeburg beschriebenen Anomaloninen revidiert. Da die meisten Typen verloren oder verschollen sind, stützt sich die Deutung überwiegend auf die Originalbeschreibungen, Wirtsangaben und auf eigene Zuchterfahrungen. Für zwei Taxa werden Lectotypen festgelegt. Es ergaben sich 10 neue Synonyme. Zur Klärung einer verworrenen taxonomischen und nomenklatorischen Situation war bei Anomalon canaliculatum Ratzeburg, 1844 die Auswahl eines Neotypus notwendig.Nomenklatorische Handlungencanaliculatum (Ratzeburg, 1844) (Agrypon), Neotype described as Anomalon canaliculatumcapillosum Hartig, 1838 (Anomalon), syn. n. of Agrypon clandestinum (Gravenhorst, 1829)menyanthidis Boie, 1855 (Anomalon), syn. n. of Barylypta delictor (Thunberg, 1822)pyriforme Ratzeburg, 1852 (Anomalon), syn. n. of Erigorgus latro (Schrank, 1781)scabridum Boie, 1855 (Anomalon), syn. n. of Heteropelma megarthrum (Ratzeburg, 1848)segne Tosquinet, 1896 (Anomalon), syn. n. of Argypon batis (Ratzeburg, 1852)sphingum Ratzeburg, 1847 (Anomalon), syn. n. of Aphanistes klugii Hartig, 1838unicolor Ratzeburg, 1844 (Anomalon), syn. n. of Therion circumflexum (Linnaeus, 1758)xanthum Boie, 1855 (Anomalon), syn. n. of Erigorgus cerinops (Gravenhorst, 1829)stenostigma Thomson, 1892 (Anomalon (Agrypon)), syn. n. of Argypon batis (Ratzeburg, 1852)gliscens (Hartig, 1838) (Aphanistes), Lectotype described as Anomalon gliscenspicta Boie, 1836 (Gravenhorstia), Lectotypecalcator Wesmael, 1849 (Heteropelma), Lectotype, syn. n. of Heteropelma megarthrum (Ratzeburg, 1848)The Anomaloninae described by Boie, Hartig and Ratzeburg are revised. Because the most types are lost or not available the interpretation of the majority of species bases on original descriptions, host dates and own rearing experiences with Anomaloninae. Two lectotypes are designated and 10 new synonyms are indicated. For clarifying a confuse taxonomic and nomenclatoric situation it was necessary to select a neotype for Anomalon canaliculatum Ratzeburg, 1844. Nomenclatural Actscanaliculatum (Ratzeburg, 1844) (Agrypon), Neotype described as Anomalon canaliculatumcapillosum Hartig, 1838 (Anomalon), syn. n. of Agrypon clandestinum (Gravenhorst, 1829)menyanthidis Boie, 1855 (Anomalon), syn. n. of Barylypta delictor (Thunberg, 1822)pyriforme Ratzeburg, 1852 (Anomalon), syn. n. of Erigorgus latro (Schrank, 1781)scabridum Boie, 1855 (Anomalon), syn. n. of Heteropelma megarthrum (Ratzeburg, 1848)segne Tosquinet, 1896 (Anomalon), syn. n. of Argypon batis (Ratzeburg, 1852)sphingum Ratzeburg, 1847 (Anomalon), syn. n. of Aphanistes klugii Hartig, 1838unicolor Ratzeburg, 1844 (Anomalon), syn. n. of Therion circumflexum (Linnaeus, 1758)xanthum Boie, 1855 (Anomalon), syn. n. of Erigorgus cerinops (Gravenhorst, 1829)stenostigma Thomson, 1892 (Anomalon (Agrypon)), syn. n. of Argypon batis (Ratzeburg, 1852)gliscens (Hartig, 1838) (Aphanistes), Lectotype described as Anomalon gliscenspicta Boie, 1836 (Gravenhorstia), Lectotypecalcator Wesmael, 1849 (Heteropelma), Lectotype, syn. n. of Heteropelma megarthrum (Ratzeburg, 1848
Beiträge zur Taxonomie und Faunistik der paläarktischen Trauermücken (Diptera, Sciaridae): Teil III. - Die Sciaridae des Zoologischen Instituts der Martin-Luther-Universität Halle/Wittenberg und des Staatlichen Museums für Tierkunde Dresden.
No full textDie Sammlungen paläarktischer Sciariden des Zoologischen Instituts der Martin-Luther-Universität Halle/Wittenberg und des Staatlichen Museums für Tierkunde Dresden wurden revidiert. Zusammen enthalten sie 35 Arten in 10 Gattungen. In Halle befinden sich die Typen von Lycoriella (Lycoriella) roederi (Lengersdorf, 1931) comb. nov. und Plastosciara (Plastosciara) longipennis Lengersdorf, 1931 die ausführlich beschrieben und abgebildet wurden. Viele interessante Fundmeldungen für die europäische Fauna werden mitgeteilt.Nomenklatorische Handlungenroederi (Lengersdorf, 1931) (Lycoriella (Lycoriella)), comb. n. hitherto Neosciara roederilongipennis Lengersdorf, 1931 (Plastosciara (Plastosciara)), LectotypeThe collections of Palaearctic Sciaridae of the Zoological Institute of the Martin-Luther-Universität Halle/Wittenberg and of the Staatliches Museum für Tierkunde Dresden have been revised. All together there are comprised 35 species of 10 genera. In Halle are housed the types of Lycoriella (Lycoriella) roederi (Lengersdorf, 1931) comb. nov. and Plastosciara (Plastosciara) longipennis Lengersdorf, 1931 which have been redescribed and figured. Several interesting records for the European fauna are given. Nomenclatural Actsroederi (Lengersdorf, 1931) (Lycoriella (Lycoriella)), comb. n. hitherto Neosciara roederilongipennis Lengersdorf, 1931 (Plastosciara (Plastosciara)), Lectotyp
Aktivitäts- und Siedlungsdichte von epigäischen Raubarthropoden in Winterweizenfeldern im Raum Halle/Saale.
No full textIn den Jahren 1986 bis 1989 wurden Untersuchungen zur Aktivitätsdichte epigäischer Raubarthropoden (Araneae; Carabidae; Staphylinidae) in Winterweizenbeständen mittels Bodenfallen in der Nähe von Halle/Saale durchgeführt. Ziel der Untersuchungen war es, Ergebnisse zur prozentualen Zusammensetzung der polyphagen Räuber, ihrer Aktivitätsdichte im Verlaufe der Vegetationsperiode und ihrer Dominanzstruktur zu ermitteln. Von besonderem Interesse waren die Laufkäfer. Im Untersuchungszeitraum konnten 5 bis 7 Arten als eudominant bzw. dominant eingestuft werden. Am häufigsten war die Art Poecilus cupreus (L.), die mit Ausnahme des Jahres 1988 eine Aktivitätsdominanz von über 30 % erreichte.
Ergänzende Untersuchungen zur Siedlungsdichte der epigäischen Raubarthropoden fanden in den Jahren 1987 und 1988 statt. Dabei kamen die Quadratmetermethode (Leerfang), die Wiederfangmethode und das Aufschwemmverfahren zur Anwendung. Gute Resultate wurden vor allem mit der Quadratmetermethode erzielt. Die Anwendung der Methoden sollte entsprechend der jeweiligen Zielstellung der Untersuchungen gewählt werden.Experiments for estimating activity density of epigeal arthropods (Araneae; Carabidae; Staphylinidae) in winter wheat fields were carried out by pitfall trapping form 1986 to 1989 near Halle/Saale. Proportions of polyphagous predators, their activity density during the vegetation period and their dominance structure should be examined. Most interesting group were the ground beetles. During the investigations 5 to 7 species were eudominant and dominant. The ground beetle Poecilus cupreus (L.) renders in all years as eudominant species and has had without the year 1988 an activity dominance above 30 per cent.
Investigations for population density were carried out in 1987 and 1988. Square-meter-method (removal trapping), capture-recapture-method and wet extraction were used. The square-meter-method delivers good results. The use of the methods should be choiced to their aim
Raupenfliegen aus der Umgebung von Magdeburg (Diptera, Tachinidae).
No full textVon 1981 bis 1992 wurden in der weiteren Umgebung von Magdeburg 149 Arten von Raupenfliegen festgestellt. Die Arten Graphogaster nigrescens und Ramonda prunicia konnten erstmals für Deutschland nachgewiesen werden. Neben den Untersuchungsgebieten und Methoden werden die Faunenzusammensetzung, die Habitatbindung, das saisonale Auftreten und die Abundanz im Untersuchungsgebiet dargestellt.Ecological and faunistical data are compiled for 149 tachinid flies (Diptera, Tachinidae) found in the environs of Magdeburg (Germany) between 1981 and 1992. Graphogaster nigrescens and Ramonda prunicia are new for the German fauna
Revision der von Reitter & Croissandeau im Jahr 1890 aus der Umgebung von Blumenau im Staate Santa Catarina in Südbrasilien beschriebenen Scydmaeniden (Coleoptera, Scydmaenidae).
Get PDFVon Reitter und Croissandeau (1890) wurden 41 Scydmaenidenarten aus Brasilien nur in Form einer sehr kurz gefaßten Bestimmungstabelle beschrieben. Die meisten dieser Arten waren von L. Hetschko bei Blumenau in Südbrasilien gesammelt worden und sind über Croissandeau und Schaufuß an das Deutsche Entomologische Institut in Eberswalde (BRD) gelangt. Ich hatte das dort befindliche Material zur Revision entliehen. Im Zuge dieser Arbeit konnten alle Arten eindeutig beschrieben werden. Lectotypen sind festgelegt worden. Folgende taxonomische Berichtigungen waren erforderlich: - Zu Scydmaenus denticornis Reitter und Croissandeau (1890) ist Sc. saopauloi Franz (1890) synonym, Euconnus fugitor Reitter und Croissandeau ist als Synonym zu E. latipennis Reitter und Croissandeau einzuziehen. Bei der Beschreibung von Euconnus permixtus Reitter und Croissandeau und vestitus Reitter und Croissandeau wurden von den Autoren ihrer Bestimmungstabelle irrtümlich die Merkmale miteinander vermengt, so daß die Beschreibungen unzutreffend sind. Ich habe in Unkenntnis der Beschreibungen von Reitter und Croissandeau (1890) den Euconnus permixtus als Euconnus nidicola Franz (1980) und den Euconnus vestitus als Euconnus globulicollis Franz (1980) ausführlich neu beschrieben. Da die Beschreibungen von Reitter und Croissandeau, weil unzutreffend, ungültig sind, haben die von mir (1980) gegebenen Namen Gültigkeit. Euconnus clanculus Reitter & Croissandeau (1890) ist Mischart, ich habe davon Euconnus pseudoclanculus spec. nov. abgetrennt. Auch unter dem Namen Euconnus ovipennis ist im Typenmaterial nur ein Exemplar vorhanden, das ich zum Lectotypus bestimmt habe. Vier Exemplare gehören zu E. latipennis Reitter & Croissandeau. Der Name Euconnus micropterus ist von den Autoren in litt. vergeben worden, die Art war demnach noch zu beschreiben.Nomenklatorische Handlungenarion Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypeclanculus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypeeques Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Ledctotypeexcedens Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypefugitor Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), syn. n. of Euconnus latipennis Reitter & Croissandeau, 1890hetschkoi Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypelepidus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypelothari Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypemicropterus Franz, 1993 (Euconnus), spec. n.pachyscelis Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypepauper Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypepseudoclaculus Franz, 1993 (Euconnus), spec. n.subcompressus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypepermixtus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus (Pycnophus)), Lectotypevestitus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus (Pycnophus)), Lectotypeminimus Reitter & Croissandeau, 1890 (Microscydmus (Neoscydmus)), Lectotypepseudodilatatus Franz, 1993 (Scydmaenus), spec. n.saopauloi Franz, 1980 (Scydmaenus), syn. n. of Scydmaenus denticornis Reitter & Croissandeau, 1890Reitter and Croissandeau described so shorts 41 species of Scydmaendae, moustly collected by Hetschko in southern Brasil, that they can not be identify. This material is deposited now in the Deutschen Entomologisches Institut in Eberswalde (BRD) and was revised by me. The result of this revision is published in this paper. All together 36 species could be identified, Lectotypes where selected. The following exchanges of names must take place: - Scydmaenus saupauloi Franz (1980) is Synonym of Scydmaenus denticornis Reitter & Croiss. (1890), Euconnus fugitor Reitter and Croissandeau is a synonym of E. latipennis Reitter and Croissandeau. The original diagnoses of Euconnus permixtus and vestitus are mixt from the authors, so that they are not valuable. These species are described by Franz (1980) newly under the names nidicola Franz and globicollis Franz (1980) and these are the first valuable descriptions. From the typeseries of Euconnus ovipennis Reitter and Croissandeau only 1 represents this species. This specimen was selected as Lectotype, the other 4 specimens belong to Euconnus latipennis Reitter & Croiss. also two species are mixt. From the two specimens existing under this name one was selected from me as Lectotypus, the other represents a new species, I named pseudoclanculus. The collection contain also a new species named i.l. by the authors Euconnus micropterus, the description of this species is given.Nomenclatural Actsarion Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypeclanculus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypeeques Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Ledctotypeexcedens Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypefugitor Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), syn. n. of Euconnus latipennis Reitter & Croissandeau, 1890hetschkoi Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypelepidus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypelothari Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypemicropterus Franz, 1993 (Euconnus), spec. n.pachyscelis Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypepauper Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypepseudoclaculus Franz, 1993 (Euconnus), spec. n.subcompressus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus), Lectotypepermixtus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus (Pycnophus)), Lectotypevestitus Reitter & Croissandeau, 1890 (Euconnus (Pycnophus)), Lectotypeminimus Reitter & Croissandeau, 1890 (Microscydmus (Neoscydmus)), Lectotypepseudodilatatus Franz, 1993 (Scydmaenus), spec. n.saopauloi Franz, 1980 (Scydmaenus), syn. n. of Scydmaenus denticornis Reitter & Croissandeau, 189
Phylogenetisch-systematische Revision des Genus Temnorhynchus Hope, 1837 (Coleoptera: Scarabaeoidea: Melolonthidae: Dynastinae: Pentodontini). 1. Teil: Phylogenetische Analyse, mit Anmerkungen zur phylogenetisch-systematischen Methodologie.
Get PDFFür die konsequent phylogenetische Analyse des afrotropisch-ostmediterranen Genus Temnorhynchus Hope, 1837 (Insecta: Coleoptera: Scarabaeoidea: Melolonthidae: Dynastinae: Pentodontini) werden die ökologisch-adaptiven und organismischen Beziehungen einiger Strukturen des Kopfes, insbesondere der Lamina epicranialis, der Mundwerkzeuge, des Pronotum, der Beine, der Alae, des Aedoeagus sowie der Oberflächenskulptur und der Färbung untersucht. Die Relevanz dieser durch den Taxonomen definierbaren Merkmale für die phylogenetische Analyse ist zumeist gering. Das phylogenetische System kann auf der vorliegenden Datengrundlage nicht vollständig erkannt werden.
Das hypothetische phylogenetische System des Genus Temnorhynchus wird in Argumentationsschemata (\u27Cladogrammen\u27) dargestellt. Die Gattung umfaßt zwei Monophyla, die Untergattung Temnorrhynchodes Prell mit sechs madagassischen Arten sowie T. retusus und T. scutiger, die Untergattung Temnorhynchus s.str. mit 18 Arten und schließlich zwei Arten ungeklärter Verwandtschaft, T. grandicornis Fairmaire and T. cribratus Bates. Die frühere Gattung Neotemnorrhynchus Janssens, 1949, wird als jüngeres Synonym zu Temnorhynchus Hope gestellt. Als Adelphotaxon von Temnorhynchus wird die Gattungsgruppe (Dipelicus Hope + Lonchotus Arrow + Ampotis Dechambre & Madge) postuliert.
Neben der Morphologie werden Chorologie, Biogeographie, Autökologie und Phänologie der Taxa behandelt. Die rezenten Areale der Arten und Artengruppen werden unter Berücksichtigung palökologischer Befunde diskutiert. Die Temnorhynchus-Arten scheinen sandigen Boden mit hohen Gräsern (z. B. Zuckerrohr) zu bevorzugen. Kopf und Beine zeigen typische Adaptationen an das Graben im sandigen Boden. Die Schädlingsmeldung von T. coronatus (\u27sansibaricus\u27) an Kokospalmen wird widerlegt.StichwörterColeoptera, Scarabaeoidea, Melolonthidae, Dynastinae, Temnorhynchus Hope, Neotemnorrhynchus Janssens syn. nov., revision, phylogenetic analysis, theory of phylogenetic systematics, chorology, biogeography, ecological-adaptive relations, organismic relations.Nomenklatorische HandlungenNeotemnorrhynchus Janssens, 1949 (Melolonthidae), syn. n. of Temnorrhynchus Hope, 1837For the phylogenetic analysis of the afrotropical/east-mediterranean genus Temnorhynchus Hope, 1837 (Insecta: Coleoptera: Scarabaeoidea: Melolonthidae: Dynastinae: Pentodontini) the ecological-adaptive and organismic relations of some structures of the head, especially the lamina epicranialis, the mouth parts, the pronotum, the legs, the alae, the aedoeagus, the surface sculpture and the colouration are discussed. The value of these definable characters for phylogenetic systematics is mostly poor. On this basis the phylogenetic system is not completely recognizable. The hypothetic phylogenetic system of Temnorhynchus is elaborated and shown in argumentation diagrams (cladograms). The genus consists of two monophyla, i.e. the subgenus Temnorrhynchodes Prell (six Madagascan species plus T. retusus and T. scutiger) and the subgenus Temnorhynchus s. str. (18 species), and of two species sedis incertae, i.e. T. grandicornis Fairmaire and T. cribratus Bates. The former genus Neotemnorrhynchus Janssens, 1949, is a junior synonym of Temnorhynchus Hope. The genus group (Dipelicus Hope + Lonchotus Arrow + Ampotis Dechambre & Madge) is postulated as the adelphotaxon (sister group) of Temnorhynchus.
Besides morphology, the chorology, biogeography, autecology, and phenology of the taxa are studied. The Temnorhynchus species seem to prefer sandy soil with high grasses such as sugar cane. The morphology of the head and the legs shows typical adaptations to sand-burrowing habits. The record of the damage of T. coronatus (\u27sansibaricus\u27) to cocos palms is refuted.KeywordsColeoptera, Scarabaeoidea, Melolonthidae, Dynastinae, Temnorhynchus Hope, Neotemnorrhynchus Janssens syn. nov., revision, phylogenetic analysis, theory of phylogenetic systematics, chorology, biogeography, ecological-adaptive relations, organismic relations.Nomenclatural ActsNeotemnorrhynchus Janssens, 1949 (Melolonthidae), syn. n. of Temnorrhynchus Hope, 183
Monographie der paläarktischen Coryphiini (Coleoptera, Staphylinidae, Omaliinae). Supplementum 1.
Get PDFEine Gattung und 12 Arten der paläarktischen Coryphiini werden neu beschrieben: Coryphium turcicum sp. n. (NO-Türkei); Coryphium loebli sp. n. (Nepal); Coryphium smetanaorum sp. n. (Nepal); Coryphiodes franzi sp. n. (Kaschmir); Coryphiodes schuelkei sp. n. (Tadschikistan); Altaioniphetodes gen. n., Typusart Altaioniphetodes ryvkini sp. n. (Altai); Ophthalmoniphetodes piger sp. n. (Rila-Gebirge); Ophthalmoniphetodes maljovicensis sp. n. (Rila-Gebirge); Eudectus reductus sp. n. (Wrangel-Insel); Boreaphilus schawalleri sp. n. (Chabarowsk); Boreaphilus hokkaidensis sp. n. (Hokkaido, Sachalin) und Boreaphilus wunderlei sp. n. (Cordillera Cantabrica). Die neuen Taxa werden ins phylogenetische System der Tribus integriert. Alle neuen Arten werden abgebildet. Zoogeographische Besonderheiten werden diskutiert und die Fundorte auf Verbreitungskarten dargestellt. Zusätzlich werden für einige bekannte Arten neue Funde mitgeteilt. Einige Beziehungen zwischen den paläarktischen und nearktischen Teilfaunen werden diskutiert und ihre Diversitäten miteinander verglichen. Bestimmungstabellen werden zur Aufnahme der neuen Taxa teilweise neu erstellt. Das System der Coryphiini von Watanabe (1990) wird diskutiert und korrigiert.Nomenklatorische Handlungenryvkini Zerche, 1993 (Altaioniphetodes), spec. n.hokkaidensis Zerche, 1993 (Boreaphilus), spec. n.schawalleri Zerche, 1993 (Boreaphilus), spec. n.wunderlei Zerche, 1993 (Boreaphilus), spec. n.franzi Zerche, 1993 (Coryphiodes), spec. n.schuelkei Zerche, 1993 (Coryphiodes), spec. n.loebli Zerche, 1993 (Coryphium), spec. n.smetanaorum Zerche, 1993 (Coryphium), spec. n.turcicum Zerche, 1993 (Coryphium), spec. n.reductus Zerche, 1993 (Eudectus), spec. n.maljovicensis Zerche, 1993 (Ophthalmoniphetodes), spec. n.piger Zerche, 1993 (Ophthalmoniphetodes), spec. n.Altaioniphetodes Zerche, 1993 (Staphylinidae), gen. n.One genus and 12 species of the Palaearctic Coryphiini are described as new: Coryphium turcicum sp. n. (NE-Turkey); Coryphium loebli sp. n. (Nepal); Coryphium smetanaorum sp. n. (Nepal); Coryphiodes franzi sp. n. (Kashmir); Coryphiodes schuelkei sp. n. (Tadzhikistan); Altaioniphetodes gen. n., type species Altaioniphetodes ryvkini sp. n. (Altai); Ophthalmoniphetodes piger sp. n. (Rila Mountains); Ophthalmoniphetodes maljovicensis sp. n. (Rila Mountains); Eudectus reductus sp. n. (Wrangel Island); Boreaphilus schawalleri sp. n. (Khabarovsk); Boreaphilus hokkaidensis sp. n. (Hokkaido, Sachalin), and Boreaphilus wunderlei sp. n. (Cordillera Cantabrica). The new taxa are integrated in the phylogenetic system of the tribe. All new species are figured. Zoogeographical features are discussed and records mapped. Additional records of known species are noted. Some relations between the Palaearctic and Nearctic partial faunas are discussed and their diversities compared. Keys are partly made new to add the new taxa. The system of the tribe Coryphiini by Watanabe (1990) is discussed and corrected. Nomenclatural Actsryvkini Zerche, 1993 (Altaioniphetodes), spec. n.hokkaidensis Zerche, 1993 (Boreaphilus), spec. n.schawalleri Zerche, 1993 (Boreaphilus), spec. n.wunderlei Zerche, 1993 (Boreaphilus), spec. n.franzi Zerche, 1993 (Coryphiodes), spec. n.schuelkei Zerche, 1993 (Coryphiodes), spec. n.loebli Zerche, 1993 (Coryphium), spec. n.smetanaorum Zerche, 1993 (Coryphium), spec. n.turcicum Zerche, 1993 (Coryphium), spec. n.reductus Zerche, 1993 (Eudectus), spec. n.maljovicensis Zerche, 1993 (Ophthalmoniphetodes), spec. n.piger Zerche, 1993 (Ophthalmoniphetodes), spec. n.Altaioniphetodes Zerche, 1993 (Staphylinidae), gen. n
Oogenese und Symbiontenübertragung bei Sogatodes orizicola Muir. (Homoptera: Delphacidae).
No full textWeibchen von Sogatodes orizicola Muir. beherbergen hefeartige Symbionten (YLS), die in syncytialen Bereichen den Ovarien benachbart sind. Die Ovarien gehören zum meroistisch-telotrophen Typ und benötigen nach dem Schlupf der Weibchen 2-3 Tage zur Ausbildung der ersten ablagereifen Eier. Die Infektion der Symbionten findet in Analogie zu Laodelphax striatellus Fall. über das epitheliale Zwischenstück (epithelialer Pfropfen) zwischen den Eikammern statt, wenn das Ei innerhalb der Eikette eine bestimmte Größe (bis 0,3 mm) erreicht hat. Die Symbionten penetrieren einzeln das zu diesem Zeitpunkt gelockerte Epithel und dringen jeweils in die in Richtung Germarium liegende primäre Oocyte ein. Dort konsolidieren sie sich im weiteren Verlauf zum Symbiontenball, der an Größe weiter zunimmt, vom Chorion mit eingeschlossen wird, und dem künftigen Individuum die Symbiontenausstattung garantiert.Females of Sogatodes orizicola Muir. harbour yeast-like symbiotes (YLS), which are limited to syncytia of the fat body near the ovarioles. The ovarioles are of the meroistic-telotrophic type and need 2-3 days after hatching to produce the first ripe eggs. The infection of the symbiotes take place through the epithelial connection (epithelial plug) between the primary oocytes like in Laodelphax striatellus Fall., when the egg has reached a certain size (upto 0,03 mm). The symbiotes single penetrate into the epithel, which is loosed at this time, and enter the primary oocyte at the posterior pole. There they form a symbiote ball, which is growing larger until egg laying. It is enclosed by the chorion and guarantees the symbiont equipment of the next host generation
Karyotype and male internal Reproductive System of Aetalion reticulatum L. (Aetalionidae, Cicadelloidea, Cicadina): Phylogenetic Aspects.
No full textDie ersten Angaben über Anatomie des männlichen Geschlechtssystems und Karyologie der Familie Aetalionidae, der primitivsten zwischen den Cicadelloidea, sind erhalten. Die Männchen von Aetalion reticulatum L. haben 9 Follikel in jedem paarigen Testis, Ahnansdrüsen kurz, offensichtlich von zusammengewickelten Tubuli geformt, 2n=21, XO. Tolania opponens Walk.? (Tolania ist eine primitive Gattung von unklarer systematischer Stellung) hat 8 Follikel, 2n=21, XO. Ein solcher Karyotyp ist auch bei anderen primitiven Vertretern der Cicadelloidea gefunden und als ein ursprüngliches für die Superfamilie angesehen (Emeljanov, Kirillova, 1989). Diese Ansicht ist durch unsere Angaben bestätigt.The first data on anatomy of male reproductive system and karyology of the family Aetalionidae, the most primitive one among the Cicadelloidea, have been obtained. Males of Aetalion reticulatum L. have 9 follicles in each of the paired testes, short accessory glands apparently fromed by twisted tubules, 2n=21, XO. - Tolania opponens Walk.? (a species of a primitive genus of an uncertain tyxonomical position) has been found to have 8 follicles and 2n=21, XO. Such a karyotype, earlier found in other primitive representatives of the Cicadelloidea is regarded as the initial one for the whole superfamily (Emeljanov, Kirillova, 1989). The last view is supperted by our data