Beiträge zur Entomologie = Contributions to Entomology (E-Journal)
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On the Nanophthalmus fauna of Georgia (Coleoptera: Staphylinidae: Scydmaeninae): With 24 figures and 1 map
Full text linkLediglich zwei beschriebene Arten der Gattung Nanophthalmus Motschulsky, 1851 waren bislang aus Georgien bekannt. Die Bearbeitung von fast durchweg erst in den letzten Jahren gesammeltem Material aus Georgien ergab neun weitere Arten, davon eine bereits beschrieben und erstmals aus Georgien nachgewiesen, zwei unbenannt (Männchen unbekannt) und sechs neu beschrieben: Nanophtalmus egrisicus spec. nov. (Zemo Svaneti); N. svaneticus spec. nov. (Zemo Svaneti); N. truncatus spec. nov. (Racha); N. brachati spec. nov. (Kvemo Svaneti); N. convexus spec. nov. (Adjara); N. simplex spec. nov. (Adjara). Die Identität und der taxonomische Status des zuvor vermutlich fehlgedeuteten N. armeniacus (Reitter, 1884) werden diskutiert. Die aus Georgien nachgewiesenen Nanophthalmus-Arten sind anophthalm und lokalendemisch, drei im Kleinen Kaukasus und fünf im Großen Kaukasus westlich von Süd-Ossetien. Ihre derzeit bekannten Verbreitungsgebiete werden anhand einer Karte illustriert. Die Gattung enthält derzeit insgesamt 19 beschriebene Arten.
Nomenklatorische Handlungen
Nanophthalmus brachati spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:839F9CB9-48AD-4468-8C2E-2B938E215426 Nanophthalmus convexus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:8ADC681F-B423-4D3D-AAEE-7FE22C0024E9 Nanophthalmus egrisicus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:65510254-39B3-4515-A167-3EE5AA314978 Nanophthalmus simplex spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A80BEF2E-A12F-45FD-95EA-0A49BA3FB407 Nanophthalmus svaneticus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:2D324FFE-B0B5-47B6-86F3-181A88B591D7 Nanophthalmus truncatus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:92C16788-BA1A-4A0F-8871-83658AA468D0Only two named species of Nanophthalmus Motschulsky, 1851 were previously known from Georgia. A study of mostly recently collected material from Georgia yielded nine additional species, one of them previously described and reported from Georgian territory for the first time, two unnamed (male unknown), and six newly described and illustrated: Nanophtalmus egrisicus spec. nov. (Zemo Svaneti); N. svaneticus spec. nov. (Zemo Svaneti); N. truncatus spec. nov. (Racha); N. brachati spec. nov. (Kvemo Svaneti); N. convexus spec. nov. (Adjara); N. simplex spec. nov. (Adjara). The identity and taxonomic status of N. armeniacus (Reitter, 1884), a previously probably misinterpreted species, are discussed. The Georgian Nanophthalmus species are anophthalmous and locally endemic, three in the Lesser Caucasus and five in the Greater Caucasus west of South Ossetia. Their distributions are mapped. The genus now includes a total of 19 described species.
Taxonomic acts
Nanophthalmus brachati spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:839F9CB9-48AD-4468-8C2E-2B938E215426 Nanophthalmus convexus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:8ADC681F-B423-4D3D-AAEE-7FE22C0024E9 Nanophthalmus egrisicus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:65510254-39B3-4515-A167-3EE5AA314978 Nanophthalmus simplex spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A80BEF2E-A12F-45FD-95EA-0A49BA3FB407 Nanophthalmus svaneticus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:2D324FFE-B0B5-47B6-86F3-181A88B591D7 Nanophthalmus truncatus spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:92C16788-BA1A-4A0F-8871-83658AA468D
New species, synonymies, combinations, and records of micropterous Athetini from China (Coleoptera: Staphylinidae: Aleocharinae)
Full text linkZwei ungeflügelte und lokalendemische Arten der Gattung Bellatheta Roubal, 1928 sowie vier der Gattung Atheta Thomson, 1858, Untergattung Microdota Mulsant & Rey, 1873, werden aus China beschrieben und abgebildet: Bellatheta qiliana spec. nov. (Qinghai, Gansu); B. aucticeps spec. nov. (Yunnan: Gaoligong Shan); Atheta (Microdota) clarata spec. nov. (Yunnan: Gaoligong Shan); A. (M.) minica spec. nov. (Sichuan: Songpan); A. (M.) qinlingica spec. nov. (Shaanxi: Qinling Shan); A. (M.) biformis spec. nov. (Gaoligong Shan). Für zwei bereits beschriebene Arten werden neue Abbildungen erstellt. Zwei Namen, einer der Gattungs- und einer der Artgruppe, werden synonymisiert: Bellatheta Roubal, 1928 = Oroekklina Pace, 1999, syn. nov.; Atheta (Microdota) amischoides Assing, 2006 = A. (M.) wuliangensis Pace, 2017, syn. nov. Fünf Namen werden neu kombiniert: Bellatheta daxuensis (Pace, 1999), comb. nov., B. excaecata (Assing, 2009), comb. nov., B. proiecta (Assing, 2002), comb. nov., B. smetanai (Pace, 2004), comb. nov. (alle bisher in Oroekklina) und Franzidota geostiboides (Assing, 2011), comb. nov. (ex Platyola Mulsant & Rey, 1875). Weitere Nachweise von zwei Bellatheta- und fünf Microdota-Arten werden aus China gemeldet. Kataloge der aus China bekannten Bellatheta- und ungeflügelten Microdota-Arten werden erstellt. Einschließlich der neu beschriebenen Arten und Synonymien wurden bislang 15 Bellatheta- (davon sieben ungeflügelt) und 85 Microdota-Arten (19 davon ungeflügelt) aus China nachgewiesen. Die Microdota-Fauna Taiwans umfasst 13 Arten, vier davon ungeflügelt. Die Verbreitungsgebiete der brachypteren Bellatheta-Arten Chinas werden anhand einer Karte illustriert.
Taxonomische Handlungen
Bellatheta qiliana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:F391FF78-2A4B-4BEA-BB85-85AC8E30FE70Bellatheta aucticeps spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:1A3E6AAA-2C3C-44B8-A911-4F1246774075Atheta clarata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:EE3C4E47-FEAB-413A-81C7-A063529A5235Atheta minica spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:E325AF25-C1DD-441C-B7D5-AB2ACF109581Atheta qinlingica spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:1590B986-DE95-458C-AFE3-71CC51AB4106Atheta biformis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:30A8940E-5B8A-4E27-997F-777E8FFF3E80Two micropterous and locally endemic species of Bellatheta Roubal, 1928 and four of Atheta Thomson, 1858, subgenus Microdota Mulsant & Rey, 1873, from China are described and illustrated: Bellatheta qiliana spec. nov. (Qinghai, Gansu); B. aucticeps spec. nov. (Yunnan: Gaoligong Shan); Atheta (Microdota) clarata spec. nov. (Yunnan: Gaoligong Shan); A. (M.) minica spec. nov. (Sichuan: Songpan env.); A. (M.) qinlingica spec. nov. (Shaanxi: Qinling Shan); A. (M.) biformis spec. nov. (Gaoligong Shan). New illustrations are provided for two previously described Microdota species. One genus-group and one species-group synonymy are proposed: Bellatheta Roubal, 1928 = Oroekklina Pace, 1999, syn. nov.; Atheta (Microdota) amischoides Assing, 2006 = A. (M.) wuliangensis Pace, 2017, syn. nov. Five new combinations are proposed: Bellatheta daxuensis (Pace, 1999), comb. nov., B. excaecata (Assing, 2009), comb. nov., B. proiecta (Assing, 2002), comb. nov., B. smetanai (Pace, 2004), comb. nov. (all of them previously in Oroekklina), and Franzidota geostiboides (Assing, 2011), comb. nov. (ex Platyola Mulsant & Rey, 1875). Additional records of two species of Bellatheta and of five species of Microdota are reported from China. Catalogues of the Bellatheta species and the micropterous Microdota species recorded from China are provided. Including the new species and synonymies, 15 species of Bellatheta, seven of them micropterous, and 85 of Microdota, 19 of them micropterous, have been reported from China. The Microdota fauna of Taiwan is composed of 13 species, four of them micropterous. The distributions of the micropterous Bellatheta species of China are mapped.
Taxonomic acts
Bellatheta qiliana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:F391FF78-2A4B-4BEA-BB85-85AC8E30FE70Bellatheta aucticeps spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:1A3E6AAA-2C3C-44B8-A911-4F1246774075Atheta clarata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:EE3C4E47-FEAB-413A-81C7-A063529A5235Atheta minica spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:E325AF25-C1DD-441C-B7D5-AB2ACF109581Atheta qinlingica spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:1590B986-DE95-458C-AFE3-71CC51AB4106Atheta biformis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:30A8940E-5B8A-4E27-997F-777E8FFF3E8
A new species of Paramyopa Kröber (Diptera: Conopidae) from South Africa
Full text linkParamyopa clementsi spec. nov. (Diptera, Conopidae) wird aus Südafrika (Nordkap) beschrieben, und ihre Abgrenzung von den beiden anderen bekannten Arten dieser afrotropischen Gattung wird dargelegt.
Nomenklatorische Handlungen
Paramyopa clementsi spec. nov. – urn:lsid:zooank.org:act:28720591-141E-46D8-AFDA-3922BCE0BD48Paramyopa clementsi spec. nov. (Diptera, Conopidae) is described from South Africa (Northern Cape), and its diagnosis from the two other known species of this Afrotropical genus is set out.
Nomenclatural acts
Paramyopa clementsi spec. nov. – urn:lsid:zooank.org:act:28720591-141E-46D8-AFDA-3922BCE0BD4
Description of a new species and new faunistic records of the genus Anomala Samouelle (Coleoptera, Scarabaeidae, Rutelinae) from China and neighboring regions
Full text linkAnomala xiongi Wang & Zorn spec. nov. wird aus Yunnan, China, beschrieben. Diese neue Art unterscheidet sich von allen anderen bekannten Anomala-Arten durch lang abstehende Haare auf den primären Rippen der Elytren. Darüber hinaus werden neue Funde von zehn Anomala-Arten aus China und angrenzenden Ländern präsentiert.
Nomenklatorische Handlungen
Anomala xiongi Wang & Zorn spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:F10AD66D-BEF8-41E2-B22D-42D0492D9E95Anomala xiongi Wang & Zorn spec. nov. is described from Yunnan, China. This new species can be distinguished from all other known Anomala species by conspicuous long erect setae rising from the primary costae of elytra. Additionally, ten new distributional records of Anomala species from China and neighboring countries are provided.
Nomenclatural act
Anomala xiongi Wang & Zorn spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:F10AD66D-BEF8-41E2-B22D-42D0492D9E9
Barcoding and interspecific relationships of Macaronesian Weevils (Coleoptera: Curculionoidea)
Full text linkIn dieser integrativ-taxonomischen Studie werden für 468 der 735 bisher beschriebenen lauri-makaronesischen Arten und Unterarten der Rüsselkäfer (Curculionoidea) mitochondriale CO1-Barcodes in 1388 Proben vorgelegt. Ein Bayes‘scher Baum (elektronisches Supplement) gibt Einblicke in die Beziehungen innerhalb der Arten und Unterarten, ohne ein phylogenetisches Gesamtbild oberhalb der Gattungsebene anzustreben. Mit Ausnahme einiger weniger diskutierter Fälle erlaubt der vorliegende Datensatz von DNA-Barcodes eine zuverlässige Re-Identifizierung und bemerkenswerte Differenzierung von Arten und wird die Entdeckung und Beschreibung neuer Rüsselkäfer-Arten - sowie deren (Re-) Synonymisierung - von den Kanaren, Madeira, und den Azoren beschleunigen. Nur in einem einzigen Fall, bei den eingewanderten, verwandten Arten Rhinoncus castor und R. bruchoides (Ceutorhynchinae) aus Madeira, ergab die molekulare (Re-)Identifizierung einen unauflösbaren Widerspruch zu unserer morphologischen Artbestimmung. In den meisten Fällen wurden die morphologischen Bestimmungen zuvor durch Vergleiche mit dem Typenmaterial untermauert und sequenzierte Exemplare wurden in einer Referenzsammlung für spätere Nachbestimmungen hinterlegt.In an integrative taxonomic approach, this study presents mitochondrial CO1 barcodes for 468 of the 735 so far described Lauri-Macaronesian weevil (Curculionoidea) species and subspecies in 1388 samples. A Bayesian tree (electronic supplement) provides insights into within-species relationships, without aiming at phylogenetic accuracy above genus level. With the exception of a few discussed cases, the present dataset of DNA barcodes allows a reliable re-identification and remarkable differentiation of species and will accelerate the discovery of new weevil species from the Canary, Madeira and Azores archipelagos. Only in a single case, the similar species Rhinoncus castor and R. bruchoides (Ceutorhynchinae) from Madeira, did the molecular (re)identification reveal an unresolvable contradiction with our morphological species identification. In many cases, morphological determinations were bolstered by comparisons with the type material. Sequenced specimens were mounted and deposited in a reference collection for later re-determinations
New species and records of Leptusa from the Georgian Caucasus (Coleoptera: Staphylinidae: Aleocharinae): With 14 figures and 2 maps
Full text linkWährend dreier im Jahr 2021 durchgeführter Forschungsreisen nach West-Georgien wurden 923 Individuen der Gattung Leptusa Kraatz, 1858 gesammelt. Sie gehören zu zehn Arten, von denen zwei beschrieben und abgebildet werden: Leptusa (Neopisalia) pugiofera spec. nov. (Georgien: Kvemo Svaneti); L. (N.) insculpta spec. nov. (Georgien: Zemo Svaneti). Die derzeit bekannten Verbreitungsgebiete von fünf Arten werden anhand von Karten illustriert. Die Leptusa-Fauna der Kaukasusregion sensu lato ist nunmehr durch 40 Arten vertreten, von denen 21 (11 exklusiv) aus Georgien nachgewiesen wurden. Die paläarktische Fauna enthält insgesamt 420 Arten und 74 Unterarten in 71 Untergattungen.
Nomenklatorische Handlungen
Leptusa pugiofera spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:65DB13D7-F5EB-4C7A-816A-6C3891641F7A Leptusa insculpta spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:CE43945E-ABB8-41D8-BA13-DE93033EA108Three field trips to West Georgia conducted in 2021 yielded 923 specimens of Leptusa Kraatz, 1858 belonging to ten species, two of which are described and illustrated: Leptusa (Neopisalia) pugiofera spec. nov. (Georgia: Kvemo Svaneti); L. (N.) insculpta spec. nov. (Georgia: Zemo Svaneti). The distributions of five species are mapped. The Leptusa fauna of the Caucasus region sensu lato is now represented by a total of 40 species, 21 of which (11 exclusive) have been recorded from Georgia. The Palaearctic fauna includes 420 species and 74 subspecies in 71 subgenera.
Taxonomic acts
Leptusa pugiofera spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:65DB13D7-F5EB-4C7A-816A-6C3891641F7A Leptusa insculpta spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:CE43945E-ABB8-41D8-BA13-DE93033EA10
The Neotropical species of the genus Lithocharodes Sharp, 1876 (Coleoptera: Staphylinidae: Staphylininae: Xantholinini)
Full text linkDie neotropischen Arten der Gattung Lithocharodes wurden bearbeitet. Insgesamt wurden 26 neue Arten gefunden. Diese sind: L. aculeata spec. nov., L. ashei spec. nov., L. bierigi spec. nov., L. bicornis spec. nov., L. boliviana spec. nov., L. brooksi spec. nov., L. compacta spec. nov., L. curtipennis spec. nov., L. denticulata spec. nov., L. dubiosa spec. nov., L. ecuadoriensis spec. nov., L. elongata spec. nov., L. hanagarthi spec. nov., L. karinae spec. nov., L. katharinae spec. nov., L. lescheni spec. nov., L. nigerrima spec. nov. L. nigrita spec. nov., L. obscura spec. nov., L. pampana spec. nov., L. peruana spec. nov., L. silvicola spec. nov., L. somoleptoides spec. nov., L. surinamensis spec. nov., L. triangula spec. nov., und L. verhaaghi spec. nov. Die folgenden Arten, die unter der Gattung Lithocharodes beschrieben wurden, wurden zur Gattung Somoleptus Sharp, 1885 gestellt: S. cavicola (Blackwelder, 1943) (neue Kombination) und S. strigulata (Blackwelder 1943) (neue Kombination). Folgende vier Arten, die unter der Gattung Somoleptus beschrieben wurden, gehören in die Gattung Lithocharodes: L. bicolor (Sharp, 1885) (neue Kombination); S. gracilis Sharp, 1885 ist konspezifisch mit L. bicolor (Sharp, 1885) (neues Synonym); L. clavicornis (Erichson, 1839) beschrieben als Leptacinus clavicornis und von Sharp (1885) zu Somoleptus gestellt, gehört ebenfalls in die Gattung Lithocharodes (neue Kombination); L. elegans (Sharp, 1885) (neue Kombination); L. gracilis, L. rambouseki und L. cameroni (neue Synonyme) sind konspezifisch mit L. fusciventris Sharp, 1885. Neue Funde von den Westindischen Inseln und Zentralamerika werden für L. floridanus (LeConte, 1880) und L. nigripennis (LeConte, 1863) aufgeführt.
Nomenklatorische Handlungen
Lithocharodes aculeata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A18023B2-0E8E-4094-A5ED-3DCF051C0185Lithocharodes ashei spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:3464349F-B225-4FFB-A2DA-A9F5F286E872Lithocharodes bierigi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:40819238-8854-4AA3-8080-FEA8778C77CELithocharodes boliviana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:352DDE6B-383B-45B8-90B1-1D1689422F37Lithocharodes brooksi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:3903CAF2-1B67-4B6A-9979-72E6336CA165Lithocharodes compacta spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:3253E356-C82F-425A-B034-8AD4AFFB91F7Lithocharodes curtipennis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:49C417E3-A17C-4A28-9D32-950C09CDBD1DLithocharodes denticulata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:9B194FB8-EFFE-4301-9681-174E24B19557Lithocharodes dubiosa spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A9BFC64A-5AEA-499E-ABB9-94BE1F8F05B6Lithocharodes ecuadoriensis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:D5751DC8-DA8F-4F7E-A57E-3FCB3BE8A990Lithocharodes elongata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:E056AF32-00F8-4072-97F7-7FA40129C9BALithocharodes hanagarthi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:CB47DB88-4D42-4FC9-AF39-A5ED1D1758A3Lithocharodes karinae spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:067347B8-B4E1-4B17-96D3-9ADBA83D340FLithocharodes katharinae spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:B16D6F77-971F-4D61-9934-BAB22A68A1A9Lithocharodes lescheni spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:56C738F3-B7E8-48CD-8D89-549249716A46Lithocharodes nigerrima spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:AC1C7A9C-0F22-4211-B88E-F95ACF767B38Lithocharodes nigrita spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:51DB16D4-FB55-4338-B12D-AFD4290322C0Lithocharodes obscura spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:F520ED25-EB0D-4CFB-AD03-F8322592C96CLithocharodes pampana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:5EFDF07C-A8EE-42CB-B1E8-901599251C83Lithocharodes peruana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:44E3E16F-6262-4A6B-8BF1-CE656372382ALithocharodes silvicola spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:307A352E-8017-4653-AB6C-530BB6694978Lithocharodes somoleptoides spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:0FBFC297-E285-4637-853C-2DC467FE2E1CLithocharodes surinamensis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:AF3EE982-3573-4991-9AEF-A34345F2BA88Lithocharodes triangula spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:8BCFB5FF-F6A3-4F93-A1CE-033F3898DE6BLithocharodes verhaaghi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:37168761-B2E0-4845-94ED-83B48C45CF71The Neotropical species of the genus Lithocharodes were studied. A total of 26 new species were found. These are: L. aculeata spec. nov., L. ashei spec. nov., L. bierigi spec. nov., L. bicornis spec. nov., L. boliviana spec. nov., L. brooksi spec. nov., L. compacta spec. nov., L. curtipennis spec. nov., L. denticulata spec. nov., L. dubiosa spec. nov., L. ecuadoriensis spec. nov., L. elongata spec. nov., L. hanagarthi spec. nov., L. karinae spec. nov., L. katharinae spec. nov., L. lescheni spec. nov., L. nigerrima spec. nov., L. nigrita spec. nov., L. obscura spec. nov., L. pampana spec. nov., L. peruana spec. nov., L. silvicola spec. nov., L. somoleptoides spec. nov., L. surinamensis spec. nov., L. triangula spec. nov., and L. verhaaghi spec. nov. The following species described under Lithocharodes were transferred to the genus Somoleptus Sharp, 1885: S. cavicola (Blackwelder, 1943) (comb. nov.) and S. strigulata (Blackwelder 1943) (comb. nov.). The following four species described under the genus Somoleptus were transferred to Lithocharodes: L. bicolor (Sharp, 1885) (new combination) and S. gracilis Sharp, 1885 (new synonymy), which is conspecific with L. bicolor; L. clavicornis (Erichson, 1839) described as Leptacinus clavicornis and transferred to Somoleptus by Sharp (1885) (new combination); L. elegans (Sharp, 1885) (new combination); L. gracilis, L. rambouseki, L. cameroni (new synonymies) are conspecific with L. fusciventris Sharp, 1885. New records from the West Indies and Central America were given for L. floridanus (LeConte, 1880) and L. nigripennis (LeConte, 1863). Lectotypes were designated for L. fusciventris, L. gracilis, L. fuscula, and L. spinigera.
Nomenclatural acts
Lithocharodes aculeata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A18023B2-0E8E-4094-A5ED-3DCF051C0185Lithocharodes ashei spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:3464349F-B225-4FFB-A2DA-A9F5F286E872Lithocharodes bierigi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:40819238-8854-4AA3-8080-FEA8778C77CELithocharodes boliviana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:352DDE6B-383B-45B8-90B1-1D1689422F37Lithocharodes brooksi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:3903CAF2-1B67-4B6A-9979-72E6336CA165Lithocharodes compacta spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:3253E356-C82F-425A-B034-8AD4AFFB91F7Lithocharodes curtipennis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:49C417E3-A17C-4A28-9D32-950C09CDBD1DLithocharodes denticulata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:9B194FB8-EFFE-4301-9681-174E24B19557Lithocharodes dubiosa spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A9BFC64A-5AEA-499E-ABB9-94BE1F8F05B6Lithocharodes ecuadoriensis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:D5751DC8-DA8F-4F7E-A57E-3FCB3BE8A990Lithocharodes elongata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:E056AF32-00F8-4072-97F7-7FA40129C9BALithocharodes hanagarthi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:CB47DB88-4D42-4FC9-AF39-A5ED1D1758A3Lithocharodes karinae spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:067347B8-B4E1-4B17-96D3-9ADBA83D340FLithocharodes katharinae spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:B16D6F77-971F-4D61-9934-BAB22A68A1A9Lithocharodes lescheni spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:56C738F3-B7E8-48CD-8D89-549249716A46Lithocharodes nigerrima spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:AC1C7A9C-0F22-4211-B88E-F95ACF767B38Lithocharodes nigrita spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:51DB16D4-FB55-4338-B12D-AFD4290322C0Lithocharodes obscura spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:F520ED25-EB0D-4CFB-AD03-F8322592C96CLithocharodes pampana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:5EFDF07C-A8EE-42CB-B1E8-901599251C83Lithocharodes peruana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:44E3E16F-6262-4A6B-8BF1-CE656372382ALithocharodes silvicola spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:307A352E-8017-4653-AB6C-530BB6694978Lithocharodes somoleptoides spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:0FBFC297-E285-4637-853C-2DC467FE2E1CLithocharodes surinamensis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:AF3EE982-3573-4991-9AEF-A34345F2BA88Lithocharodes triangula spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:8BCFB5FF-F6A3-4F93-A1CE-033F3898DE6BLithocharodes verhaaghi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:37168761-B2E0-4845-94ED-83B48C45CF71
 
New species and additional records of Leptusa from the Palaearctic region, with a focus on the faunas of China and the Caucasus region (Coleoptera: Staphylinidae: Aleocharinae)
Full text linkElf Arten der Gattung Leptusa Kraatz, 1858 werden beschrieben und abgebildet: Leptusa (Aphaireleptusa) excisa spec. nov. (China: Shaanxi: Qinling Shan); L. (A.) grandipennis spec. nov. (China: Sichuan: Songpan env.); L. (A.) gonggana spec. nov. (China: Sichuan: Gongga Shan); L. (A.) habana spec. nov. (China: Yunnan: Haba Shan); L. (A.) auriculata spec. nov. (China: Yunnan: Diancang Shan); L. (Drepanoleptusa) emeiana spec. nov. (China: Sichuan: Emei Shan); L. (D.) jizuica spec. nov. (China: Yunnan: Jizu Shan); L. (D.) desculpens spec. nov. (China: Yunnan: Dawei Shan); L. (Chondrelytropisalia) procera spec. nov. (China: Sichuan: Songpan env.); L. (Yunnaleptusa) monscangi spec. nov. (China: Yunnan: Diancang Shan); L. (Chondrelytropisalia) pathibarana spec. nov. (Nepal: Taplejung district). Ein Name wird synonymisiert: Leptusa (Drepanoleptusa) emplenotoides Assing, 2006 = Leptusa (Aphaireleptusa) zhongdianensis Pace, 2010, syn. nov. Leptusa jinfomontis Pace, 2001 (bisher in Nesopisalia Pace, 1992) und L. calliceroides Assing, 2004 (bisher incertae sedis) werden in die Untergattung Drepanoleptusa Pace, 1982 transferiert. Ein aktualisierter Katalog der Leptusa-Arten Chinas, Taiwans und Hongkongs wird erstellt. Die Leptusa-Fauna dieser Region umfasst derzeit 73 Arten und drei Unterarten in zwölf Untergattungen. Weitere Nachweise von 22 Arten, darunter mehrere Erstnachweise, werden aus China (elf Arten), der Kaukasusregion (acht), Japan (zwei) und Südkorea (eine) gemeldet. Leptusa ist derzeit in der Paläarktis mit 418 Arten und 74 Unterarten in 71 Untergattungen vertreten.
Taxonomische Handlungen
Leptusa excisa spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:963E5B3D-F42E-411C-A6A9-F57EBCCA00E5Leptusa grandipennis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:476EFE09-A2F0-4227-8F55-AEC9D658E159Leptusa gonggana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:063A3FD3-32D8-4F48-AABA-5AB12CF1A686Leptusa habana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:217C5415-9901-4E13-8DD8-3F8AEA4CC8C1Leptusa auriculata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:1812AE30-52FF-498D-B8C2-D600DCAB2724Leptusa emeiana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:963E5B3D-F42E-411C-A6A9-F57EBCCA00E5Leptusa jizuica spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:D1844B8D-2B3B-4388-933D-F2F98883B6A6Leptusa desculpens spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A3342BAF-F31E-43E6-9636-8250A85FBD97Leptusa procera spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:C3881039-6537-452F-974C-48BDAFD02762Leptusa monscangi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:2B2ECDE0-93FD-42BB-BF27-6D7C7B8E38BCLeptusa pathibarana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:ED968EFF-8133-4318-992C-A4D401C04ADBEleven species of Leptusa Kraatz, 1858 are described and illustrated: Leptusa (Aphaireleptusa) excisa spec. nov. (China: Shaanxi: Qinling Shan); L. (A.) grandipennis spec. nov. (China: Sichuan: Songpan env.); L. (A.) gonggana spec. nov. (China: Sichuan: Gongga Shan); L. (A.) habana spec. nov. (China: Yunnan: Haba Shan); L. (A.) auriculata spec. nov. (China: Yunnan: Diancang Shan); L. (Drepanoleptusa) emeiana spec. nov. (China: Sichuan: Emei Shan); L. (D.) jizuica spec. nov. (China: Yunnan: Jizu Shan); L. (D.) desculpens spec. nov. (China: Yunnan: Dawei Shan); L. (Chondrelytropisalia) procera spec. nov. (China: Sichuan: Songpan env.); L. (Yunnaleptusa) monscangi spec. nov. (China: Yunnan: Diancang Shan); L. (Chondrelytropisalia) pathibarana spec. nov. (Nepal: Taplejung district). One synonymy is proposed: Leptusa (Drepanoleptusa) emplenotoides Assing, 2006 = Leptusa (Aphaireleptusa) zhongdianensis Pace, 2010, syn. nov. Leptusa jinfomontis Pace, 2001 (previously in Nesopisalia Pace, 1992) and L. calliceroides Assing, 2004 (previously incertae sedis) are moved to the subgenus Drepanoleptusa Pace, 1982. An updated catalogue of the Leptusa species recorded from China, Taiwan, and Hong Kong is provided. The Leptusa fauna of this region now includes 73 species and three subspecies in twelve subgenera. Additional records of 22 previously named species are reported from China (eleven species), the Caucasus region (eight), Japan (two), and South Korea (one), among them several new country and regional records. Leptusa is now represented in the Palaearctic region by 418 species and 74 subspecies in 71 subgenera.
Taxonomic acts
Leptusa excisa spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:963E5B3D-F42E-411C-A6A9-F57EBCCA00E5Leptusa grandipennis spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:476EFE09-A2F0-4227-8F55-AEC9D658E159Leptusa gonggana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:063A3FD3-32D8-4F48-AABA-5AB12CF1A686Leptusa habana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:217C5415-9901-4E13-8DD8-3F8AEA4CC8C1Leptusa auriculata spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:1812AE30-52FF-498D-B8C2-D600DCAB2724Leptusa emeiana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:963E5B3D-F42E-411C-A6A9-F57EBCCA00E5Leptusa jizuica spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:D1844B8D-2B3B-4388-933D-F2F98883B6A6Leptusa desculpens spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:A3342BAF-F31E-43E6-9636-8250A85FBD97Leptusa procera spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:C3881039-6537-452F-974C-48BDAFD02762Leptusa monscangi spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:2B2ECDE0-93FD-42BB-BF27-6D7C7B8E38BCLeptusa pathibarana spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:ED968EFF-8133-4318-992C-A4D401C04AD
Beitrag zum Vorkommen und Ausbreitung des Trauer-Rosenkäfers Oxythyrea funesta (Poda, 1761) (Coleoptera, Scarabaeidae) in Deutschland:: ein Citizen-Science-Projekt
Full text linkDer auffällig gezeichnete Trauerrosenkäfer Oxythyrea funesta konnte sich in den letzten 30 Jahren in Mitteleuropa rasant ausbreiten und eignet sich auch deshalb als Modell für Citizen-Science-Projekte. Bei „kerbtier.de“ wurde 2019 ein Kartierungsprojekt gestartet, um die Art durch Fotos der Nutzer gezielt zu melden und die Ausbreitung in Deutschland besser zu dokumentieren. Es wurden insgesamt 1.345 Anfragen von 309 Nutzern ausgewertet. Unsere Ergebnisse bestätigen, dass Oxythyrea funesta mittlerweile aus allen Regionen Deutschlands nachgewiesen ist und in der südlichen Hälfte Deutschlands eine weit verbreitete und häufige Art ist. In Norddeutschland liegt ihr aktueller Verbreitungsschwerpunkt in und um die Städte Hannover, Bremen und Hamburg. Generell scheint die Art vom Klimawandel zu profitieren, sowie durch das Vorhandensein von ausreichend Blütenpflanzen und Komposthaufen in urbanen Gebieten, wo die Art überwiegend dokumentiert wurde. Die Eignung von Citizen-Science-Projekten in der Biodiversitätsforschung wird diskutiert.The characteristic white-spotted rose beetle Oxythyrea funesta has spread rapidly in Central Europe over the past 30 years and is therefore a suitable model for Citizen Science projects. A project to document the dispersal of O. funesta in Germany was started on “kerbtier.de” in 2019 to record the species through photos uploaded by the users. 1,345 inquiries from 309 users were evaluated. Our results show that O. funesta is currently present in all regions of Germany and became a widespread and common species in the southern half of Germany. In Northern Germany, its current distribution is focused in and around the cities of Hanover, Bremen and Hamburg. In general, the species appears to benefit from climate change, as well as from the presence of sufficient flowering plants and compost heaps in urban areas where the species has been mainly documented. The suitability of Citizen-Science-projects in biodiversity research is discussed
Description of a new species of the genus Echinodera Wollaston, 1863 (Coleoptera: Curculionidae) and supplement to the weevil fauna of Kefalonia Island (Greece): With 21 figures and 5 Appendix
Full text linkDie eingehende Überprüfung von Exemplaren, welche bisher Echinodera cf. brisouti (Reitter, 1885) zugeordnet worden waren, resultiert hier in der Beschreibung von Echinodera stuebeni spec. nov. Die morphologisch ähnliche Art Echinodera peneckei Stüben, 1998 stat. nov., ehemals Unterart von E. brisouti, wird zur eigenständigen Art erhoben. Diese taxonomischen Änderungen werden durch beiderlei, den Vergleich der Barcode-Sequenzdaten (COI), sowie durch die Untersuchung der morphologischen Merkmale gestützt. Der Barcode von Echinodera peneckei wird hier erstmals mitgeteilt. In einem ersten Supplementum zur Checkliste der Rüsselkäfer Kefalonias werden hier sieben weitere Arten gemeldet.
Nomenklatorische Handlungen
Echinodera stuebeni spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:FA93775A-0021-40CE-9280-14550A14BFF6The revision of specimens which had been attributed to Echinodera cf. brisouti (Reitter, 1885) results here in the description of E. stuebeni spec. nov. The morphologically similar species Echinodera peneckei Stüben, 1998 stat. nov. is promoted to species rank, from a subspecies of E. brisouti. These taxonomic changes are supported by both, the comparison of the DNA barcodes of COI, and the investigation of morphological characters. The barcode of Echinodera peneckei is provided for the first time. In a first supplement to the faunistic list of the Curculionoidea of Kefalonia, seven further species are recorded here.
Taxonomic acts
Echinodera stuebeni spec. nov. – urn:lsid:zoobank.org:act:FA93775A-0021-40CE-9280-14550A14BFF6